以细鳞鲑(Brachymystax lenok)为实验对象,在基础饲料中添加0、0.2%、1%的金藻多糖和酵母多糖,分别标记为G1(对照组)、G2(0.2%金藻多糖)、G3(1%金藻多糖)、G4(0.2%酵母多糖)、G5(1%酵母多糖),研究不同来源β-葡聚糖对细鳞鲑生长、血清生化、肠道健康以及抗病力的影响。主要结果FG-4592价格如下:1.不同来源β-葡聚糖对细鳞鲑生长和饲料利用的影响饲料中添加不同来源β-葡聚糖饲喂细鳞鲑8周后,各组存活率均高于96%,各β-葡聚糖添加组终末体质量、增重率、特定生长率、摄食率均显著高于对照组(p<0.05),但饲料系数与脏体比均显著低于对照组(p<0.05)。G5组细鳞鲑的肥满度显著低于对照组(p<0.05),各组间肝体比无显著性差异(p>0.05)。2.不同来源β-葡聚糖对细鳞鲑鱼体生化和血清生化的影响饲料中添加不同来源β-葡聚糖显著降低了细鳞鲑鱼体粗脂肪含量(p<0.05),其中,添加量1%的两组(G3和G5)的鱼体粗脂肪含量显著低于添加量0.2%的两组(G2和G4)。G3、G4组全鱼灰分显著高于G1、G2与G5组(p<0.05)。G2、G3、G4与G5组血清总胆固醇含量显著低于G1组(p<0.05),其中G2、G4组甘油三酯含量显著高于G3、G5组(p<0.05);G2、G3、G4与G5组低密度脂蛋白胆固醇显著低于G1组(p<0.05);G3组胆汁酸含量显著低于G1组(p<0.05)。3.不同来源β-葡聚糖对细鳞鲑肠道健康的影响饲料中添加不同来源β-葡聚糖显著提高了细鳞鲑肠道补体(C3、C4)以及紧密连接蛋白(cldn-1、OCLN、ZO-1)基因表达量(p<0.05),其中,添加量1%的两组(G3和G5)显著高于添加量0.2%的两组(G2和G4)(p<0.05),且G3组C4基因表达量显著高于G5组(p<0.05);G3组ZOCalakmul biosphere reserve-1基因表达量显著高于G5组(p<0.05)。饲料中不同来源β-葡聚糖的添加也显著影响细鳞鲑肠道炎性因子基因表达量,其中IL-1β、IL-8和TNF-α促炎因子基因表达量显著下降,且G3和G5组的IL-1β、G5组IL-8以及G3、G4和G5组的TNF-α基因表达量均显著低于其他处理组(p<0.05)。对细鳞鲑肠道进行切片分析,结果发现β-葡聚糖添加组中肠绒毛长度和肌层厚度显著高于对照组(p<0.05),但各添加组之间无显著性差异。对细鳞鲑肠道菌群分析,β-葡聚糖添加组肠道微生物多样性显著低于对照组(p<0.05),G2、G3组微小杆菌属(Exiguobacterium)丰度显著高于G1组(p<0.05),链球菌属(Streptococcus)和乳球菌属(Lactococcus)丰度显著低于G1组(p<0.05),G2、G3、G4组小球菌属(Pediococcus)丰度显著高于G1(p<0.05)。4.不同来源β-葡聚糖对细鳞鲑抗杀鲑气单胞菌的影响养殖实验结束后,各实验组细鳞鲑感染杀鲑气单胞菌(Aeromonas salmonicida)5 d后的成活率分别为32.5%、47.5%、57.5%、35.0%和42.5%。攻毒前,β-葡聚糖添加组的CAT活性与对照组之间无显著GSKJ4配制性差异(p>0.05);GPx活性显著高于对照组(p<0.05),但β-葡聚糖添加组组间无显著性差异(p>0.05);β-葡聚糖添加组MDA含量显著低于对照组(p<0.05),其中G3和G5组MDA显著低于G2和G4组(p<0.05);G3组SOD活性显著高于G1组(p<0.05)。攻毒后,G2组CAT活性显著高于G4组(p<0.05);GPx活性较攻毒前明显下降,G2、G4、G5组显著低于G1组(p<0.05),且G4、G5组显著低于G2组(p<0.01);MDA含量较攻毒前明显升高,G2、G3组显著低于G1组(p<0.05);SOD活性较攻毒前明显下降,G2组显著高于G4组(p<0.05)。综上所述,饲料中添加β-葡聚糖可以显著提高细鳞鲑的免疫力,降低鱼体脂肪含量,改善肠道健康水平,并且可以提高细鳞鲑抗杀鲑气单胞菌能力。金藻源β-葡聚糖在提高细鳞鲑机体非特异性免疫力和抗杀鲑气单胞菌能力等方面优于酵母β-葡聚糖。